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馬紅球菌探針?lè)晒舛縋CR檢測(cè)試劑盒使用方法

發(fā)表時(shí)間:2024-03-14
馬紅球菌探針?lè)晒舛縋CR檢測(cè)試劑盒使用方法:

1. 樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1 樣本前處理

按照試劑盒操作說(shuō)明或者微生物樣品處理方法做好樣品前處理。

1.2 DNA 提取

根據(jù)您實(shí)驗(yàn)室的具體情況和樣品類(lèi)型,選擇適當(dāng)?shù)奶崛〔呗苑椒?。為了使?shí)驗(yàn)結(jié)果穩(wěn)定、有效、可靠,我們建議使用商品化的試劑盒進(jìn)行提取,嚴(yán)格按照對(duì)應(yīng)試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作,樣本核酸提取過(guò)程中應(yīng)避免污染,提取好的模板樣品如不能立即檢測(cè),建議-15℃以下保存。

推薦采用我們公司研發(fā)生產(chǎn)的試劑盒:Hypure 病毒基因組 DNA 提取試劑盒

2. 試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))

2.1 從-15℃以下冰箱中取出試劑盒平衡到室溫(20~25℃),注意避免強(qiáng)光照射,待完全溶解后振蕩混勻并低速離心 10 s,使用低吸附吸頭分液取樣,避免試劑損失和浪費(fèi)。

2.2 根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽(yáng)性對(duì)照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表:

試劑

鮭腎桿菌反應(yīng)液

鮭腎桿菌擴(kuò)增液

用量(樣本數(shù)為N)

19.5μL

0.5μL

2.3 在適當(dāng)容積的無(wú)菌離心管中加入上述試劑,充分振蕩混勻后 2000 rpm 離心 10 s,按照 20 μL/管分裝量將試劑分裝至八聯(lián) PCR 反應(yīng)管中。

2.4 蓋緊八聯(lián) PCR 反應(yīng)管蓋, 并注意做好相應(yīng)標(biāo)識(shí)(請(qǐng)標(biāo)記在八聯(lián) PCR 反應(yīng)管蓋兩端突出部位,切勿標(biāo)記在八聯(lián) PCR 反應(yīng)管蓋中間,以免影響信號(hào)采集)。將 PCR 反應(yīng)管轉(zhuǎn)移至樣本準(zhǔn)備區(qū),剩余試劑放回-15℃以下冰箱冷凍保存。

3. 加樣(樣本處理區(qū))

將步驟 1.2 提取的 DNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 5μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心,核酸加樣過(guò)程中應(yīng)避免污染。

4. PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))

4.1 將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi), 并記錄放置順序。

4.2 設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25 μL;

熒光通道選擇:檢測(cè)通道選擇 FAM, 淬滅通道選擇 NONE,參比熒光選 NONE。

4.4 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

步驟

循環(huán)數(shù)

溫度

時(shí)間

收集熒光信號(hào)

1

1 cycle

95℃

3min



2

40 cycle

95℃

15sec



55℃

30sec



5. 結(jié)果分析判定

5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

5.2 結(jié)果判斷

陽(yáng)性:檢測(cè)通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線。

可疑:檢測(cè)通道 Ct 值>35.0,且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤38.0 和典型擴(kuò)增曲線者為陽(yáng)性,否則為陰性。

陰性:檢測(cè)結(jié)果 Ct 值無(wú) Ct 值,無(wú)明顯的擴(kuò)增曲線。

6. 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品:無(wú)明顯擴(kuò)增曲線或無(wú) Ct 值顯示;

陽(yáng)性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期,且 Ct 值≤30;

以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。

7. 產(chǎn)品性能指標(biāo)

陰陽(yáng)性參考品符合率:5 份陽(yáng)性參考品符合率為 100%;10 份陰性參考品符合率為 100%。

最低檢測(cè)限:1.0×103copies/mL。

精密度:批內(nèi)、批間精密度檢測(cè) Ct 值的變異系數(shù)(CV)均小于等于 3%。

8. 檢測(cè)方法的局限性

樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);

樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果;

陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果;

病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果;

本檢測(cè)結(jié)果僅供參考,如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。


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